Evaluation of four bioestimulantes and three sustrates in the propagation of Vallea stipularis L.f.

Authors

  • Sonia Rosero Escuela Superior Politécnica de Chimborazo
  • Norma Erazo Escuela Superior Politécnica de Chimborazo
  • Miguel Guallpa Escuela Superior Politécnica de Chimborazo
  • Marlene Usigña Escuela Superior Politécnica de Chimborazo

DOI:

https://doi.org/10.29019/enfoqueute.v8n3.165

Keywords:

bio stimulants, emergency, propagation, substrates, Vallea stipularis

Abstract

The research consisted in evaluating four biostimulants and three substrates for the propagation of Vallea stipularis L.f. in greenhouse conditions. The biostimulants corresponded to: plant hormone rooting (B1), agrohormones 10-10-10 (B2), ESPOCH biostimulant (B3) and Gron Gibb (B4). The substrates consisted of: 50% black soil + 25% peat + 25% sand (S1); 50% black soil + 25% peat + 25% humus (S2) and 50% peat + 50% humus (S3). For the study, it was used a randomized complete design (RCD) with factorial arrangement, it was determined the coefficient of variation and the Tukey test at 5% for the separation of means. The application of the biostimulants in the substrates was done at the time of planting. According to the results obtained, the best biostimulants corresponded to B1 (plant hormone rooting), applied in the seeds for 15 minutes, with which the highest emergency percentage was obtained (70.96%); with biostimulant B2 (agrohormones 10-10-10), applied for five minutes it was obtained 70.67% and with B3 (Gron Gibb) 70.37%. The best substrate for emergence of plants was: 50% peat + 50% humus) with 73.67% of emergence, where the highest plant height and root length were achieved, instead, the ESPOCH biostimulant (microoganisms) reported a 67, 11% emergency.

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References

Agro-Orgánica. (2010). Obtenido de http://www.agrorganica.com
Aloisio, X., Gleison, A., Ivar, W., & Marcelo Lelis de Oliveira. (2003). Propagação vegetativa de cedro-rosa por miniestaquia. Árvore, 27; 139-143.
Añazco, M. (2000). Producción de plantas. Quito, Ecuador.
Balzarini, M. G., González, L., Tablada, M., Casanoves, F., Di Rienzo, J. A., & Robledo, C. W. (2008). Infostat. Manual del Usuario. Córdova, Argentina: Brujas.
Ballesteros, B., Meloni, F., & Baccheta, G. (2015). Manual para la propagación de pántulas autóctonas mediterráneas seleccionadas. Ecoplantmed, ENPI, CBC-MED.
Conchago, J. (2008). Inventario Forestal de Especies Nativas del Bosque Protector de Río Blanco parroquía Quimiag, cantón Riobamba. Riobamba: Honorable Consejo Provincial de Chimborazo.
Edmon. (1997). Suelo y Medio Ambiente en Invernaderos. Sevilla, España: Consejería de Agricultura y Pesca.
Erazo, Norma (2009). Entrevista personal (Laboratorio Biológico- ESPOCH).
Estación Meteorológica de la ESPOCH (2016). Datos climáticos de la serie 1984-2014.Riobamba.
Fernández B. J.M. y M.R. Quezada 1992. Producción de planta con uso de materiales plásticos,
3° curso nacional de plásticos en la agricultura, C.I.Q.A. Saltillo Coahuila
Guevara, M., & Villacrés, M. (1999). Producción de Plántulas en Viveros. Quito: Fundación Forestal Juan Manuel Durini. Nota Técnica N°7.
Jará, L., & Ordóñez, G. (1999). Curso de Manejo de Semillas y Viveros Forestales. Santo Domingo de los Colorados: PROFAFOR.
Laboratorio de suelos de la Facultad de Recursos Naturales de la ESPOCH. (2014). Resultados de Análisis de sustratos del ensayo. Provincia de Chimborazo. Riobamba.
Luteyn, J. L. (1999). Páramos, a checklist of plant diversity, geografhical distribution, and botanical literature. Mem.New York Bot.Gard.
Ministerio del Ambiente. (2011). Normativa forestal Bosque Andino. Obtenido de http://www.ambiente.gob.ec/sites/default/files/archivos/normativaforestal/bosquesandinos.pdf
Ministerio del Ambiente del Ecuador. (2012). Sistema de clasificación de los ecosistemas del Ecuador continental. Quito: Subsecretaria de Patrimoni Natural.
MAE. (2014). Plan Nacional de Reforestación. Documento. Quito, Ecuador.
Mulawarman, J. M., Roshetko, S. M., Sasongko, & D, I. (2003). Tree seed management- seed sources, seed collection and seed handling: a field manual for field workers and farmers. Bogor, Indonesia: International Centre for Research in Agroforetry (ICRAF) and Winrock International.
Niembro, R. A., & Fierros, A. M. (1990). Factores ambientales que controlan la germinación de las semillas de pinos. Chapingo: En: Memoria. Mejoramiento Genético y Plantaciones Forestales. Centro de Genética Forestal, A.C.
Prado, L., & Valdebenito, H. (2000). Contribución a la fenología de especies forestales nativas andinas de Bolivia y Ecuador. Quito; Ecuador: Intercooperation.
Ruiz, W. (2014). Evaluación de Tres Sustratos Para la Propagación de Tilo (Tilia cordata Mill) y Sacha Capulí (Vallea stipularis) con la Aplicación de Tres Hormonas de Enraizamiento en el Vivero del GAD Municipal del Cantón Mejía 2014 (Trabajo de pregrado). Latacunga: Universidad Técnica de Cotopaxi.
Sklenář P, J. L., Luteyn, C., Ulloa Ulloa, P. M., Jørgensen, & M.O, D. (2005). Flora genérica de los páramos-Guía ilustrada de las plantas vasculares. Mem New York Bot. Gard.
Trujillo, E. (2010). Manual de Árboles. Investigaciones Forestales. Bogotá, Colombia.
Vademécum Agrícola. (2008). Quito-Ecuador: Edifarm.
Vázquez, C., & Batis, A. I. (1996). La restauración de la vegetación, árboles exóticos vs árboles nativos. Ciencias, (043).
Vega, J. A. (1986). Secuestro de carbono en plantaciones de eucal Estudio de algunos factores que influyen en la producción de Pinus montezumae Lamb. En vivero (Tesis de maestría). Chapingo, México.

Published

2017-06-30

How to Cite

Rosero, S., Erazo, N., Guallpa, M., & Usigña, M. (2017). Evaluation of four bioestimulantes and three sustrates in the propagation of Vallea stipularis L.f. Enfoque UTE, 8(3), pp. 28 - 40. https://doi.org/10.29019/enfoqueute.v8n3.165

Issue

Section

Miscellaneous